مقدمه سالمونال بعنوان یک پاتوژن منتقل شونده از مواد غذایی مطرح بوده و یک معضل بزرگ در بهداشت جامعه در دنیا به حساب میآید.

b b 1394 زمستان 109 شماره سازندگی و پژوهش زمينه شده انجام مطالعات بر مروري مقاومت و تشخيصي هاي روش جداسازي ايران سالمونال دارويي مسئول( )نويسنده بيدهندي مرادي سهيال ایران کرج رازی سازی سرم و واکسن تحقیقاتی مؤسسه شناسی میکروب بخش 93 خردادماه پذيرش: تاريخ 94 ماه اردیبهشت يافت: تاريخ Email: s.bidhendi@rvsri.ac.ir چكيده كشورهاي بخصوص جهان نقاط اكثر و بوده جهان عمومي بهداشت مشكالت مهمترين از سالموناليي عفونتهاي نظر از عفونت عامل انتقال غذايي مواد و دام انسان ماكيان ميان اين است. برخوردار ويژهاي اهميت از توسعه حال انتريتيديس سالمونال هنوز كه ميدهد نشان شده انجام مطالعات. ميکنند ايفا مهمي نقش عمومي بهداشت و اقتصادي جنبه آزمايشگاهي جداسازي روشهاي مشكالت و محدوديتها به توجه با ميباشند. غالب سروتيپهای از موريوم تيفي سالمونال و منشاء يافتن نمود. استفاده تشخيص باال حساسيت با و اختصاصي ارزان سريع روشي عنوان به ملكولي روشهاي از ميتوان رد پالسميدي مقاومت ژنهاي گسترش باشد. اهميت حائز كنترلي استراتژيهاي بهبود ميتواند آن كانونهاي و عفونت ويژهاي اهميت از فوق موارد بين آنها انتقال و دامي و طيوري انساني موارد از شده جدا سالمونال مختلف سروتيپهاي ميان باشد مان مهم مسائل از يكي بعنوان تواند مي آنها انتشار از جلوگيري و دارويي مقاومتهاي شناسايي است. برخوردار مقاومتي الگوي شدن مشخص با ميباشد. ضروري امري مقاوم سويههاي بروز از جلوگيري منظور به مقاومتها اين بررسي و نمود. جايگزين را موثرتر بيوتيكهاي آنتي و اصالح را ماني پروتکلهای ميتوان جداشده باكتريهاي ايران دارويي مقاومت تشخيصي هاي روش جداسازي سالمونال کلیدی: کلمات

مروری بر مطالعات انجام شده زمینه... Veterinary Journal (Pajouhesh & Sazandegi) No 109 pp: 21-30 A review of studies on isolation, diagnosis and antimicrobial resistance of Salmonella in Iran By: Moradi Bidhendi, S., Dept. of Microbiology, Razi Vaccine and Serum Research Institute, Karaj, IR Iran. Received: April 2015 Accepted: May 2015 Email: s.bidhendi@rvsri.ac.ir Salmonella infection is a major public health problem in the world and in most parts of the world, particularly in developing countries are of utmost importance. Poultry, human, animal and food play an important role in transmission, economy and public health aspects. Yet studies show that Salmonella enteritidis and Salmonella typhimurium is the predominant serotypes. Due to limitations in isolation in laboratory, using molecular techniques as a rapid, inexpensive, specific and sensitive diagnostic must be used. The source of the infection could be important in the control strategies. Spread of resistance genes via plasmid among different serotypes of Salmonella is of great importance. Identification and prevention of drug resistance genes among serotypes of Salmonella could be one of the most important issues in the study of its ressistance. To determine the susceptibility patterns of isolates, the protocols of treatment can be modified and replaced with effective antibiotics. Key words: Salmonella, Isolation, Diagnosis, Antimicrobial resistance, Iran مقدمه سالمونال بعنوان یک پاتوژن منتقل شونده از مواد غذایی مطرح بوده و یک معضل بزرگ بهداشت جامعه دنیا به حساب میآید. بر اساس گزارش سازمان کنترل و پیشگیری بیماریهای امریکا )CDC( ساالنه 40000 مورد سالمونلوزیس گزارش میشود )2009.)CDC, بعالوه سالمونلوز غیر تیفوئیدی بعنوان دومین عامل عفونتهای زئونوتیک منتقله از مواد غذایی اروپا مطرح بوده و بیش از 100000 مورد سالمونلوز انسانی منتقله از مواد غذایی اروپا گزارش شده است) Food European.)Safety Authority EFSA [EFSA], 2011 اگرچه بیش از 2500 سروتيپ از سالمونال انتریکا شناسایی شده است اما عفونت ناشی از سالمونال انسان توسط تعداد محدودی سروتيپ ایجاد میشود )2007 &Weill,.)Grimont سالمونال انتریتیدیس و سالمونال تیفی موریوم بیشترین موارد جداسازی از مواد غذایی را شیوعهای اتفاق افتاده امریکا و اروپا نشان دادهاند Marcy,( EFSA, 2011;Finstad, O'Bryan,.)Crandall, & Ricke, 2012 بیشتر عفونتهاي ناشی ازسالمونال بدليل آلودگی مواد غذایی با منشاء حیوانی گوشت ماکیان و فراوردههای آنها بوده است و مواد غذايي بعنوان یک وسیله انتقالی برای سالمونال به انسان محسوب میشوند )& Marin.)Lainez, 2009 مطالعات نشان داده است كه طیور بعنوان منبعی برای سالمونلوز انسانی میباشند زیرا این باکتری میتواند دستگاه گوارش طیور کلونیزه شده و کلواک آنها بعنوان یک محل مهم برای کلونیزاسیون سالمونال بوده و طیور بعنوان ناقلین بدون عالمت مطرح میباشند. بنابراین محتویات دستگاه گوارش و کلواک جوجهها میتواند اولین منبع آلودگی سالمونال باشد al., Finstad et al., 2012; Cox et al., 2011) (Mead et 2010;. البته به سختی میتوان موارد گزارش شده ارتباط بین عفونتهای انسانی و فراوردههای طیوری را از موارد غیر طیوری تمیز داد Gast,( al., 2012.)2007; Cox et al., 2011; Koo et آلودگی میتواند حین زنجیره تولید فراوردههای طیوری مانند کشتار و خالی کردن شکم الشه ماکیان اتفاق افتد که یک ریسک فاکتور بالقوه برای انتقال اين باكتري است.)Muth, Fahimi, & Karns, 2009; Rasschaert et al., 2008( سالمونال انتریتیديس و سالمونال تیفی موریوم تاکنون بعنوان 2 سروتیپ شایع جدا شده از موارد مختلف گزارش شدهاند. البته سروتیپهای دیگر مانند سالمونال اينفنتيس سالمونال باردو سالمونال باكونگو سالمونال كوليندال سالمونال دوربان سالمونال ميجيمبوا سالمونال اونو سالمونال تامپسون سالمونال تيندا سالمونال هيدلبرگ سالمونال كنتاكي نيز شناسايي شدهاند Foley( Ezatpanah, Moradi Bidhendi, et al.,2011., et al., 2011., Ebrahimvandi, Khaki, Darvishi &Moradi Bidhendi, Davies, 2011 ),.2014.,Wales & كه ميتوانند انسان و ديگر حيوانات ايجاد بيماري نمايند 2007( Barrow,.)Gantois et al., 2009., طيور آلوده شده با سروتیپهای ذكر شده باال ميتوانند بيماري بدون عالمت داشته باشند و براي مدت طوالني باكتري را محيط وارد كنند Immer-( Van al., 2005.)seel et عفونت ناشي از سالمونال انتريتيديس و تيفي موريوم احتياج به مان دارد و يا حتي به بستري شدن بيمارستان منجر ميشود 2012( Gordon,. )Feasey, Dougan, Kingsley, Heyderman, & با كشف پنيسيلين آنتيبيوتيكها و ديگر مواد ضد ميكروبي جهت مان و كنترل پاتوژنهاي قديمي و جديد مورد استفاده قرار گرفتند كه نتيجه آن بهبود بيماري و افزايش اميد به زندگي را بر داشت. با اين حال ظهور سريع مقاومت ضد ميكروبي توسط پاتوژنهاي ميكروبي تهديدي براي بهداشت عمومي ميباشد. ظهور مقاومتهاي ميكروبي پديده جديدي نميباشد و توليد آنتيبيوتيكهاي جديد بصورت يك چالش كنترل 22

شماره 109 نشريه دامپزشكی زمستان 1394 بيماريها كشورهاي فقير و حال توسعه آمده است. سال ۲۰۱۴ سازمان بهداشت جهانی از مقاومت دارویی برابر آنتیبیوتیکها به عنوان یک "تهدید بزرگ جهانی" نام برده است. این سازمان با بررسی آمار مربوط به ۱۱۴ کشور از افزایش مقاومت دارویی همه نقاط جهان خبر داده است.)WHO,2014( اين مقاله مروري بر مطالعات انجام شده زمینه جداسازی سروتایپینگ شناسایی ملکولی و مقاومت دارویی سالمونال ايران دارد. جداسازي و سروتايپينگ سا لمونال سالمونال داراي بيش از 2500 سروتيپ است كه همگي بيماريزا ميباشند و همواره تعيین سروتیپ غالب آن از اهمیت زیادی طیور و انسان برخوردار است. این زمینه مطالعات زيادي ايران و خارج صورت گرفته است كه نشان ميدهد آلودگي سالموناليي طيور و انسان همواره وجود داشته است. مطالعات انجام شده خارج نيز آلودگي سالموناليي طيور گزارش شده است و سروتيپهاي غالب نيز انتريتيديس و تيفي موريوم گزارش شدهاند. اوایل قرن بیستم سرووارهای آداپته شده با طیور سالمونال گالیناروم وسالمونال پلوروم بصورت اندمیک مزارع مرغ امریکا و اروپا گزارش شدند 2010( al.,.)rabsch et al., 2000; Mead et بدلیل خسارتهای اقتصادی ناشی از این سروتیپها برنامههای ریشهکنی جهت کنترل بیماری از اهمیت ویژه ای برخوردار شد )2004.)Hitchner, حالیکه این سروتيپها حذف شدند سالمونال انتریتیدیس غالبیت بیشتری پیدا کرد و بعنوان یکی از موارد مشکلساز مواد غذایی و طیور دنیا مطرح شد و این فرضیه عنوان شد که سالمونال انتریتیدیس جایگاه اکولوژیکی سالمونالهای گالیناروم و پلوروم را اشغال کرده است Baumler( al., 2000 )et. بين فراوردههاي غذايي طيور تخم مرغ بعنوان مهمترين فراورده مطرح بوده است بطوريكه بین سالهای 1989-1985 تخم مرغ به عنوان %82 از موارد عفونت ناشی از سالمونال انتریتیدیس امریکا شناخته شد. همچنین میزان عفونتهای ناشی از سالمونال انتریتیدیس از اوایل دهه 90 امریکا مزارع مرغ و موارد انسانی رو به افزایش گذاشته است بطوریکه مطالعات انجام شده نشان داده است که که این سروتیپ بعنوان دومین سروتیپ عامل سالمونلوز انسان مطرح و سال 2006 مسئول %17 از موارد سالمونلوز گزارش شده امریکا بوده است 2012( al.,.)dhillion et al., 2001; Howard et مطالعات اپیدمیولوژیکی نشان میدهد که بیشترین موارد شیوع عفونتهای سالمونال انتریتیدیس ناشی از مصرف تخم مرغ و یا فراوردههای ست شده از آن بوده است و تخم مرغ نپخته بعنوان یک عامل انتقال مهم مطرح است et( Gantois Braden, 2006.)al., ;2009 ايران نيز مطالعات انجام شده حاكي از تاييد موارد فوق ميباشد بطوريكه سال 1371 از 715 گله گوشتی طیور تحت مطالعه 480 گله )%67/1( آلوده به سالمونال انتریتیدیس بودهاند. از طرف ديگر مطالعهاي شيراز نشان داد كه شایعترین سروتیپها بین 360 سالمونالی جدا شده از مرغداریهای اطراف شیراز به ترتیب %32/22 سالمونال انتریتیدیس و %11/11 سالمونال تیفی موریوم بودند. با بررسيهاي انجام شده مرغداریهای استان چهارمحال وبختیاری پس از تعیین سروتیپ 658 نمونه سالمونالی جداشده 612 نمونه )%93( سالمونال انتریتیدیس و 46 نمونه )%7( سالمونال تیفی موریوم تشخيص داده شد )1995 Salemi,.)Hemmatzadeh, مطالعهاي ديگر بر روي 100 نمونه تخم مرغ محلي شهرستان اروميه از نظر وجود سالمونال كار و از اين تعداد 6 نمونه )%6( سالمونال جدا گرديد و سروتايپينگ نمونههاي فوق هر 6 مورد سالمونال انتريتيديس تشخيص داده شد 2009( Delshad,.)Aminzare, Nairiz Naghdehi, Rasouli & اهميت سالمونال انتريتيديس تحقيقات ديگر نيز نشان داده شده است بطوريكه بيشترين سروتيپ جدا شده انتريتيديس گزارش شده است Akbarmehr,( 2010; Morshed,2013; Miranzadeh, Zahraei Salehi, & Karimi, 2012 ; Nosrati, Sabokbar, Mehroz Dezfolian, Tabarrai & Fallah, 2012; Yazdani, 2012.)Akbarian, Peyghambari, Morshed & همچنين زنجان بر روي 120 نمونه از تخم مرغهاى فلهاى و مارک دار و 120 نمونه از مرغهاى مارک دار و فلهاى آزمايشات جداسازي سالمونال انجام شد كه نشان داد شايع ترين سالمونالهاي جدا شده از پوسته تخم مرغ سالمونال انتريتيديس) %23/3 ( سالمونال آگونا و سالمونال ويرچو و مرغ سالمونال گاليناروم سالمونال آگونا و سالمونال و يرچو بودند Rahnema,( Shapouri, Eghbalzadeh, 2009 &(. مطالعات انجام شده بر روي ماكيان بومي ايران نيز مويد وجود سالمونال وغالبيت دو سروتيپ انتريتيديس و تيفي موريوم بوده اند.البته سروتيپهاي هادار و اينفنتيس نيز جداسازي شدهاند 2009( Mirzaie,.)Chashni, Hassanzadeh, Fard & مطالعات صورت گرفته ديگر طي زمانهاي مختلف نشان ميدهد كه عالوه بر دو سروتيپ شايع فوق سروتيپهاي ديگري نيز جداسازي شدهاند كه اهميت اپيدميولوژيكي اين مطلب را ميرساند بطوريكه سالمونال تامپسون )2007 al., )Dallal et سالمونال برازاويله سالمونال مونته ويدئو سالمونال نستود Bidhendi,( Moradi )Khaki, Abasi & Ghaderi 2010 سالمونال اينفنتيس سالمونال باردو سالمونال باكونگو al.,2011( ).Ezatpanah, Moradi Bidhendi, et سالمونال دوربان سالمونال اونو سالمونال تيندا سالمونال ميجيمومه سالمونال تامپسون سالمونال SIIO7 سالمونال Ebrahimvandi, Khaki,( SIIO8 Bidaki, Teh-( سالمونال اينفنتيس )Darvishi &Moradi Bidhendi2014 B, C1, گروههاي سرمي C2 )2011 ranipoor, Dadpour & Gholizade 0(2010 (Akbarmehr, گروههاي سرمي,D,C B و گروههاي سرمي غير از 2012( Yazdani, )Akbarian A-S, Peyghambari, Morshed & گروه سرمي D C و غير قابل تايپينگ )Morshed,2013( از موارد طيوري جدا شدهاند. مطالعات انجام شده بر روي گنجشك نشان از عدم جداسازي سالمونال بود 2011( Badoii, )Haghbin Nazarpak, Firozi & Asgari كه البته نميتوان با قطعيت وجود سالمونال را گنجشك رد كرد. سالمونال باکتری است که میتواند دستگاه گوارش طیور کلونیزه شود و کلواک بعنوان یک محل مهم برای کلونیزاسیون سالمونال میباشد. بنابراین محتویات دستگاه گوارش و کلواک میتواند اولین منبع آلودگی سالمونال باشد. این باکتری میتواند دستگاه تناسلی را آلوده کند و به تخم مرغ منتقل شود )2009 al., )Gantois et. جوجههای جوان میتوانند این باکتری را از طریق مدفوع دفع کرده و بدین ترتیب میتوانند سطح تخم مرغ را آلوده نمایند )2012 al., )Howard et. مطالعهای ایران میزان آلودگی اندامهاي مختلف قلب كبد تخمدان و مدفوع طيوربه سالمونال مورد بررسی قرار گرفت و نتیجه بدست آمده نشان داد که این 23

زمینه... شده انجام مطالعات بر مروری کرد جداسازي تخمدان و كبد قلب مدفوع از میتوان بترتیب را باکتری که آنجا از.)Sadeghizali, Hashempour, Kalbkhani & Delshad, 2011( زندگی مرغداریها مزارع که میباشد موش باکتری این ناقلین از یکی نتایج گرفت. صورت ناقلین این آلودگي ميزان روی بر دیگری تحقیق میکند آنها سرمي گروههاي و آلوده سالمونال به موشها که داد نشان بررسی این شد مشاهده C گروه فراوانی بیشترین و بودند آريزونا تحت و C,D,B,E.)Haddadian, Karimi, Zahraisalehi, Barin & Ghalyanchi langrodi, 2012( میتواند پس میباشد food-borne و زئونوز یک سالمونال که آنجا از مطالعهای باشد. گردش دام و انسان طیور بین آن سروتیپهای پاراتيفي سالمونال تيفي سالمونال انسان شده جدا شایع سروتیپهای و اينفننتيس سالمونال انتريتيديس سالمونال پاراتيفيC سالمونال A مطالعه و )Hamidian et al., )2009 شدند گزارش B پاراتيفي سالمونال B تيفي پارا سالمونال تيفي سالمونال شامل غالب سروتیپهای دیگر تشخيص قابل غير مواردی و A پاراتيفي سالمونال تيفيC پارا سالمونال از.)Soltan Dallal, Rastegar Lari, & Sharifi Yazdi, 2014( بودند موريوم تيفي سالمونال از ميتوان انساني شده گزارش سروتيپهاي ديگر سالمونال پاراتيفيB سالمونال تيفي سالمونال انتريتيديس سالمونال مورد 11 و اينفنتيس سالمونال ويرچو سالمونال بي سالمونال نيوپورت Abdollahi, Mohammadi, Fasihi, & Shayan(( برد نام تايپينگ قابل غير شده جدا موارد شبیه سرمی گروه نظر از سروتیپها این.Raheleh, 2011 باشد. مختلف منابع بین انتقال نشانه تواند می خود که میباشد طیور از كه است آن دهنده نشان متمادی سالهاي طي شده انجام مطالعات منشا با باكتريايي هاي بيماري مهمترين از يكي عنوان به هنوز سالمونال سالمونال شده انجام مطالعات ميرود. بشمار جهان زئونوز و غذايي داراي ها سروتيپ ساير به نسبت موريوم تيفي سالمونال و انتريتيديس غالب سروتیپ ميدهد. نشان را سروتيپها این اهميت که بوده غالبيت میباشد. اينفنتيس سالمونال موجود گزارشات به توجه با ایران بعدی سالمونال تشخيص ملكولي هاي روش حضور و داشته سالمونلوز بيماري بروز سالمونال كه اهميتي به توجه با همچنين و ميشود محسوب انسان براي جدي خطر مختلف منابع آن كه ميآيد حساب به بهداشتي معضل يك عنوان به هنوز طيور صنعت تغييرات از ناشي جديد سويههاي آمدن بوجود بدليل مشكل اين از قسمتي منابع آن سريع تشخيص لذا ميباشد قبلي سويههاي ژنتيكي ظريف مبتني روشهاي اينكه به توجه با است. برخوردار ويژهاي اهميت از مختلف هك روشهايي بردن بكار بنابراين ميباشد زمانبر جداسازي و كشت بر ميتواند دهد نشان مشكوك نمونههاي سريع را سالمونال حضور بتواند مولكولي روشهاي كند. جلوگيري اپيدميها بروز و بيماري از پيشگيري و ميباشند تشخيصي تكنيكهاي حساسترين و سريعترين از امروزه تشخيص روشهاي اين رايجترين از PCR پليمراز زنجيرهاي واكنشهاي ايجاد كه مختلفي ژنهاي از ميتوان PCR روش هستند. مولكولي انجام تحقیقات نمود. استفاده ميكنند ايفا نقش سالمونال بيماريزايي با طيور گوارش دستگاه سالمونال نسبي جمعيت تعيين جهت شده اين نسبي جمعيت كه داد نشان 16SrDNA ژن و PCR روش از استفاده بخشهای به نسبت كور روده و ايلئوم روده تحتاني بخشهاي باكتري بودن متغير نشاندهنده حاصل نتايج است. بيشتر باريك روده فوقاني بوده طيور گوارش دستگاه مختلف بخشهاي سالمونال باكتري جمعيت مرتبط بخشها اين فيزيكوشيميايي محيط و وظايف عملكرد با كه است نمودن رمز با ژن این ميباشد. hila ژنها از يكي.)Sidavi, )2013 است نفوذ وتسهیل مهاجم ژنهاي بیان باعث نسخهبرداري تنظیمی پروتئینهاي هك ديگر ژنهاي از ميشود. روده پوششی سلولهاي داخل به سالمونال زا ميتوان گرفت كمك آنها از سالمونال ملكولي تشخيصهاي ميتوان نشان شده انجام مطالعات برد. نام viab rfbj, fljb, inva, flic spv, sefa تيفي سالمونال ميتوان rfbj, fljb, inva flic ژنهاي با كه است داده شناسايي را انتريتيديس سالمونال spv, sefa ژنهاي از استفاده با و موريوم استفاده با ميتوان آن اساس بر كه ديگري ژن.)Chashni et al., )2009 كرد كه است viab ژن پرداخت تيفي سالمونال شناسايي به PCR روش از نمونههاي تيفي سالمونال تشخيص براي فوق روش با ژن اين شناسايي باال حساسيت با و اختصاصي ارزان سريع روشي بعنوان ميتواند كلينيكي اين با روش اين همچنين )Saadati et al., )2009 گيرد قرار استفاده مورد باكتري اين سريع شناسايي به قا ژنوم از كپي 19 حدود حساسيتي با ژن Amini, Soleimani, Ghalyanchi Langeroudi, & Majidzadeh,( ميباشد ميتواند و دارد وجود سالمونالها تمام ژن اين ديگر طرف از 2010(..)Akbarmehr, )2010 شود استفاده سالمونال جنس شناسايي و تشخيص دارد اهميت PCR روش با ملكولي تشخيصهاي كه مواردي ديگر از 100fg حساسيت داراي روش اين بطوريكه است روش اين حساسيت از )%23( مورد 9 و مرغ گوشت نمونههاي از )%40( مورد 16 شناسايي hila ژن از استفاده.)Nayebi et al., )2011 است بوده تخممرغ نمونههاي نشان موريوم تيفي سالمونال شناسايي جهت فرنگي گوجه PCR روش و ون و سطح را سالمونال تشخيص قت روش اين كه است داده از پس گوجه گرم هر باكتري 10 2 و 10 1 بترتيب شده تلقيح گوجههاي.)Shafaati, Shefaati & Khodadost, 2011( دارد را غنيسازي ساعت 6 سالمونالي مورد 10 روي بر inva ژن و PCR روش با ملكولي بررسي بودند نظر مورد ژن حاوي 10 مورد كه داد نشان طيور از شده جدا ميتواند كه )Karimidareabi, Karimi & Ebrahimi Mohammadi, 2011( سالمونال جنس شناسايي جهت ژن اين از ميتوان كه باشد مورد اين بيانگر است توانسته كه ميباشد ديگري ملكولي روش PCR-ELISA نمود. استفاده PCR جمله از ديگر روشهای معايب و موجود محدوديتهای از بسياري و سريع نتيجه میتواند و بوده سريع و اختصاصي روش اين سازد. مرتفع را روي بر كار به ميتوان روش اين ويژگيهاي از باشد. داشته بر را مطلوب ژنومي DNA از نانوگرم 1 روش اين حساسيت همچنين برد. نام نمونه 96 بيشتر از بيشتر برابر 1000 آن حساسيت و ميباشد باكتري سلول 10 و Ardestani, Mousavi Gargari,Nazarian( است آگارز ژل الكتروفورز از روش نمود استفاده آن از ميتوان كه ديگري روش &(. Amini, 2008 روش اين از استفاده بر مبني گزارشي ايران كه است Real time PCR استفاده بدليل روش اين گفت بايد اما ندارد وجود سالمونال شناسايي جهت ماده انگشتنگاري روشهاي از است. پرهزينه و گران فلورسنت مواد از اندونوكلئازي( آنزيمي برشهاي از استفاده )با RFLP از ميتوان ژنتيكي فضاي و ژنومي خارج نواحي ژنتيكي ماده )تكثير ERIC-PCR و استفاده متنوعي آنزيمهاي از ميتوان اول روش برد. نام ژن( دو مابين 24

1394 زمستان دامپزشكی نشريه 109 شماره استفاده ERIC مناطق براي اختصاصي پرايمرهاي از دوم روش و نمود گونهاي بين تمايز قت از RFLP روش با مقايسه روش اين ميشود. ميتوان روش اين از استفاده با و است برخوردار بيشتري گونهاي داخل و كم هزينه با و كوتاه زمان مدت را مشكوك نمونههاي از زيادي تعداد انتريتيديس سالمونال نمونه 30 ژنتيكي تنوع بررسي كرد. انگشتنگاري ERIC-PCR روش از استفاده با انساني موارد و غذايي مواد از شده جدا و 1 شباهت صد 95 با اصلي گروه 4 جدايه 29 كه داد نشان نشان بررسي اين داشتهاند. قرار متفاوت الگوي با گروه يك جدايه انتريتيديس سالمونالي سويههاي بين زيادي ژنتيكي گوناگوني كه داد محتمل بسيار واحد كلون يك از سويهها اين گرفتن منشاء و نداشته وجود جدا سالمونالي نمونه 75 ديگر بررسي.)Sanei et al., )2010 است بررسي و آمد بدست سروتيپ 5 كه شدند طيورسروتايپينگ از شده آنزيمهاي و flic ژن با PCR-RFLP روش با سروتيپ 5 اين ملكولي شد مشاهده متفاوت آنزيمي الگوي 5 و 4 بترتيب Sau3AI و HhaI همچنين.)Khaki, Moradi Bidhendi, & Ezatpanah, 2014( PCR- روش با شده جداسازي سالمونالي نمونه 30 ديگري بررسي گرفتند قرار ژنومي انگشتنگاري مورد HhaI آنزيم و flic ژن با RFLP آمد بدست سالمونال مختلف سروتيپ 8 بين متفاوت الگوي 4 و بررسي.)Ebrahimvandi, Moradi Bidhendi et al., 2014( اين با پلوروم و گاليناروم سالمونال نمونههاي روي بر ديگري آمد بدست آنزيمي الگوي دو تنها Hinp1I آنزيم و روش نتايج.)Cheraghchi, Khaki, Moradi Bidhendi & Sabokbar, 2014( سالمونالهاي ميتواند اختصاصيت با روش اين كه ميدهد نشان آمده بدست آنزيم مورد اما كرده تفكيك يكديگر از فوق آنزيم با را پلوروم و گاليناروم بين مشابهي الگوهاي و نداشته وجود توانايي اين Sau3AI و HhaI هاي دارد. وجود متفاوت سروتيپهاي DNA دماي هم تكثير روش از توان مي ملكولي شناسايي روشهاي از پرايمر 4 از استفاده با روش اين برد. نام )LAMP( حلقه به وابسته طي و ميگيرد قرار شناسايي مورد هدف DNA از ژني ناحيه 6 مجموع آنزيم از استفاده و سري سنجاق نواحي تشكيل با و دنبالهدار فرايندي و ميشود انجام دما تك يك روش اين مييابد. تكثير پليمراز DNA روشهاي ساير مانند نيز روش اين البته ندارد. را سازي واسرشت مرحله روش كه است اين است مسلم كه آنچه اما دارد محدوديتهايي ملكولي روش از تر ارزان برابر 10 و دقيقتر برابر 100 سريعتر برابر 3 LAMP مختلف آزمايشگاههاي گستردهاي كاربرد تواند مي و ميباشد PCR که پیشرفتهایی به توجه با.)Moradi et al., )2009 باشد داشته LAMP روش و یافت تغییر نیز LAMP روش دارد وجود زمینهای هر به نسبت آزمايش زمان یافته تغییر روش این شد. ابداع فلورسنت نياز عدم روش اين مزاياي از يافت. كاهش دقيقه 70 به PCR و LAMP است PCR روش به نسبت ترموسايكلر دستگاه و دمايي چرخههاي به. )Karami, Bagheri, Ahmadi & Pouraliganji, 2013( کرد استفاده سالمونال شناسایی آن از میتوان که دیگری روش میباشد. Polymyxin Cloth Enzyme Immunoassay (P-CEIA( روش که میکسین پلی با شده داده پوشش استر پلی از استفاده پایه بر روش این رد میباشد. استوار است مناسب ساکارید لیپوپلی آنتیژنهاي جذب براي استفاده سالمونال شناسایی بادي آنتی بجاي B میکسین پلی از روش این شکل و بوده پایدار 7 تا 2 ph بین آنتیبادیها برخالف ماده این میگردد. داراي میکسین پلی همچنین میباشد. دسترس براحتی نیز آن خالص سراسر روش این است. سالمونال LPS به اختصاصی چسبندگی قت برخوردار زیادي اهمیت از غذایی مواد سالمونال تشخیص جهت جهان بیشتری حساسیت از Ab-EIA مانند االیزا دیگر های روش به نسبت و است است. 10 6 معادلcfu/ml P-CEIA روش حساسیت بطوریکه است برخوردار همچنین است. 10 5 معادلcfu/ml Ab-EIA روش میزان این حالیکه میدهد اختصاص خود به Ab-EIA به نسبت را کمتري زمان روش این روش.)Shokri, Tabaraei, Hatami, & Nilchizade Rahbar, 2012( است. PCR مولتیپلکس روش نمود استفاده آن از توان می که دیگری شوند. تقویت منفرد واکنش یک میتوانند متعدد ژنهای روش این انتریتیدیس سالمونال گونهي و جنس اختصاصی پرایمرهای از روش این سالمونال های گونه سایر از را گونه این است قا و میشود استفاده.)Salehi, Namnam&Mosavari, )2011 دهد. تشخیص ساعت 3 از کمتر نمونههاي PCR و االيزا كشت روش سه بین مقایسهای بررسی بهتر كشت و كشت از بهتر PCR روش كه داد نشان نتايج غذایی مواد Hosseinpour, Sabokbar,( باشد مي سالمونال تشخيص به قا االيزا از طاليي استاندارد بعنوان همواره كشت البته.)Bahktiari & Parsa, 2013 3202 روي بر 1391 سال يافته انجام ومطالعات است شده شناخته است بوده سالمونال مختلف سروتيپهاي جداسازي از حاكي ماكيان نمونه دیگری روش.)Akbarian, Peyghambari, Morshed & Yazdani, 2012( )PFGE( الكتروفورزيس ژل فيلد پالس روش برد نام آن از توان می که های ویژگی از بررسی حال ایزولههای میان ژنتیکی ارتباط است.بررسی کلونهای بین ارتباط اثبات باشد. می ملکولی تایپینگ بر مبتنی روشهای شود. داده تشخیص آلودگی منبع که میکند فراهم را امکان این پاتوژن یک تمایز قت با ژنوتیپی تایپینگ روشهای بین طالیی استاندارد روش این تشخیص تمایز برای روش این از میباشد. باال تکرارپذیری و تایپپذیری میتوان شده جدا سویههای بین فیلوژنتیکی ارتباط بررسی و طبقهبندی الگوهای آوردن بدست دارد. كاربرد اپيدميولوژيكي مطالعات و پرداخت نمونههای از انتریتیدیس سالمونال جدایه 40 بین متفاوت فیلدی پالس جغرافیایی پراکندگی با سالمونال یکسان سوشهای که داد نشان بالینی باشد داشته متفاوتی فیلدی پالس الگوی پراکندگی میتواند مختلف روي بر شده انجام بررسي.)Ahmadi, Ranjbar, & Sarshar, )2013 پالس الگوي 39 فوق روش با ايران طيوري منابع از سالمونال جدايه 47 ساب كه ميدهد نشان روش اين باال تفكيك قت آمد. بدست فيلدي مختلف جغرافيايي مناطق از شده جدا سروتيپ يك مختلفي تايپهاي.)Golab,Khaki& Noorbakhsh, )2014 باشد داشته وجود ميتواند بر و ميرود شمار به تايپينگ قتمند تكنيكهاي از يكي MLVA كه داشته وجود باكتريها ژنوم تكراري هاي توالي ميباشد. PCR پايه مورفيك پلي متفاوت استرينهاي ميان تكرارها از تعدادي ميتوانند تعداد MLVA تكنيك ميشود. گفته VNTR تواليها اين به كه باشند تعداد تفاوت روش اين ميگيرد.اساس قرار ارزيابي مورد تكرارها اين ژنوتايپينگ جهت قتمند ابزارهاي ها لوكوس است.اين تكرارها اين بر مبتني عددي و ساده اطالعات ميتوانند كه ميشوند محسوب باكتري 25

زمینه... شده انجام مطالعات بر مروری طيوري جدايه 75 روي بر مطالعهاي آورند. بوجود را تكراري تواليهاي گرفت. قرار شناسايي مورد ژنتيكي تيپ 5 انتريتيديس سالمونال انساني و نشانه استاندارد سويه تيپ و ايراني جدايههاي تيپ 5 ميان محسوس تفاوت زمان طول كه است منطقه ايراني بومي كلون يك وجود احتمالي است شده كلونهايي زير پيدايش منشاء محدود تكاملي تغييرات تحمل با.)Ghaderi, Moradi Bidhendi et al., 2013( موارد سالمونال شناسايي جهت شده انجام ملكولي روشهاي inva hila ژنهايfliC كه داد نشان شده انجام تحقيقات مختلف شامل viab ها ژن بقيه و داشته سالمونال تشخيص را كاربرد بيشترين محققين همه شده انجام مطالعات بودند. 16SrDNA و spv flijb rfbj كم زمان با و هزينه كم باال حساسيت داراي را مختلف ملكولي روشهاي كردهاند. عنوان سالمونال دارويي مقاومت عفونتهاي مان گزينه بهترين بيوتيكها آنتي آنجاييكه از بتاالكتام بيوتيكهاي آنتي به نسبت مقاومت ظهور ميباشند سالموناليي است. شده زمينه اين نگرانيها افزايش باعث مهاجم سالمونالهاي عليه ديگر طرف از و سو يك از آنتيبيوتيكها نوع اين بيرويه مصرف متاسفانه افزون روز شيوع باعث دارويي مقاومت ژنهاي انتقال باكتريها قابليت سويههاي ظهور است. شده مان روند مشكالت بروز و مقاوم سويههاي و دامي انساني جمعيتهاي سالمونال سروتيپهاي ميان مقاوم مطالعات است. گرفته قرار بسياري توجه مورد اخير ساليان طيوري است داده نشان انساني موارد از شده جدا سالمونالهاي روی بر شده انجام سيپروفلوكساسين به جدايهها كليه سالمونال انساني جدايه 127 از كه نشان مقاومت اسيد ناليديكسيك به جدايهها %45/7 اما بوده حساس كامال ده بكارگيري با زمينه اين ديگر مطالعه.)Hamidian et al., )2009 دادند داد نشان انساني سالموناليي عفونتهاي مان رايج كمتر آنتيبيوتيك %19/1 كلرامفنيكل به %13/2 آمپيسيلين به نسبت جدايهها از %16/2 تتراسايكلين به %50/7 كالو كوآموكسي به %25/7 كوتريموكسازول به و تيكارسيلين به %4/4 سايكلين داكسي به %67/6 آميكاسين به %1/5 ايميپنم به نسبت نمونهها از كدام هيچ بودند. مقاوم پيپراسيلين به %23/5.)Ranjbar, Naghoni, Panahi,& Izadi, 2009( ندادند نشان را مقاومتي نظیر بتاالکتام آنتیبیوتیکهای به نسبت مقاومت ظهور مهاجم سالمونالهای علیه انتخاب اولين بعنوان سوم نسل سفالوسپورینهای روزافزون گسترش دلیل است. شده زمینه این نگرانیها افزایش باعث بتاالکتاماز آنزیمهای سازنده پالسمیدی ژنهای غالبا مقاومتها گونه این بتا سفالوسپورینها)حلقه مرکزی هسته شدن فعال غیر باعث که میباشند هاي بتاالكتام فراواني بطوريكه میشوند. دارو شدن اثر بی نتیجه و الکتام( شده جدا سالمونالی باليني سويههاي CTX-M تيپ الطيف وسيع ناليديكسیك به مقاومت ميزان بيشترين كه داد نشان سالمونال 174 جدايه ملكولي بررسيهاي و است بوده )%43( تتراسايكلين و اسيد) %49/4 ( تعلق 15-bla CTX-M كالس به و مثبت bla CTX-M سويههاي همه.)Tajbakhsh et al., 2010( داشتند وسيع الكتامازهاي بتا نوع تعيين و حضور مورد تحقيق هدف با جدايه 129 روي بر شده انجام مطالعات سالمونال گونههاي الطيف اسيد) %45/7 ( ناليديكسيك به نسبت مقاومت بيشترين انساني سالمونالي و آمپيسيلين) %15/5 ( كو-تريموكسازول) %36/4 ( تتراسايكلين) %43/4 ( سيپروفلوكساسين به نسبت جدايهها همه آمد. بدست كلرامفنيكل) %14/7 ( و bla CTX-M ژن داراي مقاوم جدايههاي بودند. حساس سفوكسيتين و Hamidian, Tajbakhsh, Walther-Rasmussen, & Zali,( بودند bla TEM باليني ايزوله 174 مقاومت ازدياد بررسي اخير سالهاي 2009(. و bla TEM ژنهاي داراي ايزولهها اين كليه كه شد داده نشان سالمونال.)Tajbakhsh et al., )2012 بودند منفي blashv ژن نظر از و blactx موارد از شده جدا سالمونالي مورد 96 روي بر دارويي حساسيت نتايج است بوده سيلين آمپي به نسبت مقاومت بيشترين كه داد نشان انساني ديده سيپروفلوكساسين و پنم ايمي به نسبت مقاومتي گونه هيچ صورتيكه نمونههاي Bla-ctx-m-type ژن وجود نشانگر ESBL بررسي نتايج نشد. گرديد مشاهده نيز سفتازيديم به مقاومت مورد همچنين 4 بود فوق همچنين )Abdollahi, Mohammadi, Fasihi & Shayan Raheleh, 2011a( Abdollahi( گرديد مشاهده جدايه 45 گانه چند بيوتيكي آنتي مقاومت.)et al., 2011b خود به را محققان توجه اسيد ناليديكسيك آنتيبيوتيك به مقاومت انساني شده جدا سالمونالي 138 مجموع از بطوريكه است داشته معطوف همچنين كرد. گزارش مقاوم اسيد ناليديكسيك به را )%64( ايزوله 89 1387 1386 سالهاي بيوتيك آنتي اين به نسبت مقاومت صد ايزولههاي ميان گرديد. گزارش %67 و %64 %59 بترتيب 1389 و 40 C سرمي گروه به مربوط ايزوله 46 اسيد ناليديكسيك به مقاوم بودند سرميB گروه به مربوط ايزوله 3 و D سرمي گروه به مربوط ايزوله مقاومت بررسي نمونهها همين روي بر.)Naghoni, & Ranjbar, )2010 مورد 5 كه شد انجام سفتازيديم و سفوتاكسيم به نسبت بيوتيكي آنتي گرديد گزارش سفتازيديم به مقاومت مورد 4 و سفوتاكسيم به مقاومت.)Abdollahi, Najafipour, Kouhpayeh, Meshkibaf, & Naghdi, 2011( به نسبت انساني جدايه 22 از %92/3 دارويي حساسيت به توجه با Soltan Dal-( آميكاسین و اسيد ناليديكسيك زوكسيم سفتي كلرامفنيكل نميباشند يكديگر با مقايسه قابل نتايج كه ميدهد نشان )lal et al., 2014 بود. شده گزارش بسيار اسيد ناليديكسيك به مقاومت قبلي مطالعات زيرا گوشت از شده جدا سالمونالهاي اسيد ناليديكسيك به مقاومت مورد Soltan Dallal et( شد گزارش %90/6 مقاومت اين ميزان بندي بسته هاي همان انساني موارد روي بر شده انجام تحقيقات نتايج با كه )al., 2009 است. داشته مشابهت سال مقاومت طيوري جدايههاي روي بر شده ديگرانجام مطالعات بترتيب و كليستين و اريترومايسين به مرغ تخم پوسته را بيوتيكي آنتي چند سويههاي صد )Shapouri et al., )2009 اريترومايسين به مرغ مورد Sanei et( %73/3 باليني موارد و %20 غذايي ايزولههاي مقاومتي سويههاي صد و فلومكوئين %38/8 به مقاومت بيشترين )al., 2009 كردند. گزارش )Morshed & Peighambari, 2010( %61/2 مقاومتي چند سروتيپها تمام كه داد نشان سالمونال سروتيپ 70 روي بر ديگر مطالعه سفوتاكسيم پنم ايمي افلوكساسين سفتيزوكسيم بيوتيكهاي آنتي به به نسبت مقاومت بودند.بيشترين حساس آميكاسين و انروفلوكساسين الگوي 39 همچنين شد. ديده تتراسايكلين و نيتروفورانتويين سفالكسين 26

1394 زمستان دامپزشكی نشريه 109 شماره شناخته ESBL مولد جدايه 10 و شد شناسايي آنها دارويي مقاومت Gharehkhani, بودند)& blashv ژن داراي جدايه 6 تعداد اين از كه شد طيوري جدايه مورد 75 روي بر ديگر بررسي همچنين.)Khaki, 2011 ايميپنم انروفلوكساسين جنتامايسين به جدايهها % 100 كه داد نشان ناليديكسيك برابر مقاومت بيشترين و هستند حساس سفترياكسون و 63 سالمونال جدايه 75 از همچنين شد. مشاهده انتوئين نيتروفور و اسيد آنتي از بيشتري تعداد يا سه به چندگانه مقاومت داراي %( )84 مورد مطالعات.)Ezatpanah, Moradi Bidhendi, et al., 2011( بودند بيوتيكها غالبيت و سالمونال وجود مويد نيز ايران بومي ماكيان روي بر شده انجام و هادار سروتيپهاي البته اند. بوده موريوم تيفي و انتريتيديس سروتيپ دو نورفلوكساسين به نسبت جدايهها تمامي شدهاند. جداسازي نيز اينفنتيس.)Chashni, Hassanzadeh, Fard, & Mirzaie, 2009( بودند حساس نيز سالهاي طي كه است اين نمود اشاره آن به ميتوان مورد اين آنچه به رو سالمونال باكتري دارويي مقاومت ژنهاي 1393 لغايت 1388 كه ميدهد نشان انساني موارد شده انجام مطالعات و بوده افزايش همچنان سالها اين طي اسيد ناليديكسيك بيوتيك آنتي به مقاومت تتراسايكلين به مقاومت است. باال بسيار مقاومت ميزان و دارد وجود جدايه از سفتازيديم و سفوتاكسيم كوتريموكسازول كلرامفنيكل سيلين آمپي شده اشاره آن به انساني موارد آنها به مقاومت كه بودند مواردي ديگر تتراسايكلين اسيد ناليديكسيك به مقاومت نيز طيوري موارد بود. ديده فلومكوئين و كليستين سفالكسين اريترومايسين نيتروفورانتوئين مورد دو هر تتراسايكلين و اسيد ناليديكسيك به مقاومت است. شده آنتيبيوتيك دو اين به مقاومت ژنهاي گسترش نشانه طيوري و انساني و پنم ايمي به مقاومت از تاكنون ميباشد. جدايهاي مختلف موارد است. نرسيده چاپ به گزارشي جدايهها بين سيپروفلوكساسين گيري نتيجه كه باشد مي بيماريهايي از سالمونلوز طيور بيماريهاي بين بيماريهاي از طيور پرورش زمينه اقتصادي زيانهاي و ضرر بر عالوه بين بيماري اين شيوع افزايش ميباشد. طيور و دام انسان مشترك كنترل توانايي عدم ظاهرا و اخير دهههاي خصوصا طيور و دام انسان فراهم جمعيت افزايش با است. كرده بيشتر را آن اهميت بيماري انتشار و اين است. شده تبديل جهانى جامعه مهم موضوعي به غذا نمودن مانند باشند انسان براي باال غذايي ارزش داراى كه غذاهايى توليد راستا بيماريهايي كه آنجا از برخوردارند. ويژهاي اهميت از طيوري فراوردههاي بتوان بايد بنابراين مييابند انتقال انسان به ماكيان طريق از سالمونلوز نظير اين كه انديشيد تدابيري هم و آورد بدست را گردش سروتيپهاي هم به را كند عمل ناقل بصورت ميتواند كه باكتري حضور حتي و بيماري برساند. حداقل روشهاي جداسازي زمينههاي شده انجام مختلف مطالعات ساليان طي كه است مطلب اين دهنده نشان دارويي مقاومت و تشخيصي موارد بهداشتي معضل يك بعنوان سالمونال هنوز حال تا گذشته و انتريتيديس سالمونال سروتيپهاي و بوده مطرح دامي و انساني طيوري حضور نبايد البته ميباشند. غالب سروتيپهاي جزء موريوم تيفي سالمونال مختلف روشهاي بين ديگر طرف از گرفت. ناديده را سروتيپها ديگر ميباشد موضوع اين دهنده نشان زمينه اين شده گرفته بكار تشخيصي مناسبي روش را PCR پايه بر ملكولي مختلف روشهاي محققان تمام كه شيوع كردهاند. مطرح باليني نمونههاي سالمونال حضور دادن نشان براي جمله از مختلف باكتريهاي بين گذشته دهه دارويي مقاومتهاي بطوريكه ميباشد. باكتري اين مقاومت ژنهاي گسترش نشانه سالمونال تتراسايكلين و اسيد ناليديكسيك به مقاومت ميدهند نشان گزارشات البته است. افزايش به رو و است باال بسيار طيوري و انساني مورد دو هر داشت. دور نظر از نبايد را ديگر بيوتيكهاي آنتي به مقاومت 1/4 ساله هر )CDC,2009( امريكا بيماريها مركز گزارشات طبق بر مرگ مورد 400 حدود ميان اين از و شده دچار سالمونلوز به نفر ميليون سيستم با افراد و مسن افراد سال 5 زير كودكان ميشود. گزارش مير و آنتي مصرف همچنين دارند. قرار بااليي معرض شده تضعيف ايمني سويههاي پيدايش باعث اينكه بر عالوه ماكيان غذايي جيره بيوتيكها نظر از بلكه ميشود انسان به آنها انتقال و بيوتيكي آنتي مقاومت داراي بهداشت بر ناپذيرى جبران صدمات و نبوده صرفه به مقرون نيز اقتصادي سويههاي كنترلي و نظارت برنامههاي مىكند. وارد جامعه سالمت و تغذيه بدست ميتواند سالمونال بيوتيكي آنتي مقاومتهاي و گردش انساني منابع بين مقاومتي ژنهاي انتقال و گردش سويههاي آوردن.)Control & Prevention, )2009 باشد اهميت حائز دامي و طيوري مطالعات بررسي به ميتواند ملكولي ژنوتيپي روشهاي از استفاده همچنين مختلف جغرافيايي مناطق از شده جدا سروتيپهاي بين اپيدميولوژيك نمايد. مشخص را گردش سروتيپهاي اين منشاء و پرداخته استفاده مورد منابع 1 - Abdollahi, A., Mohammadi, A., Fasihi, M., & Shayan Raheleh, R. R. (2011a). Emergence of BLA-CTX-M-Type gene in Salmonella enterica serotypes isolated from patients stool. Journal of Isfahan Medical School (I.U.M.S), Vol, 28, No, 116, pp:987-996. 2 - Abdollahi, A., Najafipour, S., Kouhpayeh, S. A., Meshkibaf, M. H., & Naghdi, M. (2011b). Salmonella enterica: Serotyping, drug resistance & extended spectrum of β-lactamase (ESBLs). Journal of Fasa University of Medical Sciences, Vol, 1,No,1,pp: 38-44. 3-Ahmadi, Z., Ranjbar, R. & Sarshar, M. (2013). Genotyping of Salmonella enterica serovar Enteritidis strains isolated from clinical samples by Pulsed-Field Gel Electrophoresis (PFGE). Journal of Isfahan Medical School, Vol, 31, No,40,pp:117-128. 4-Akbarian, R., Peyghambari, S.M., Morshed, R. & Yazdani, A. (2012). Survey of Salmonella infection in Iranian poultry flocks. Iranian Veterinary Journal. Vol,8, No,3, pp: 5-10. 5-Akbarmehr, J. (2009). 1389 Determining Salmonella serogroups isolated from poultry and identification hila gene by PCR. Microbial Biotechnology Vol,6, No,2, pp: 33-38. 27

مروری بر مطالعات انجام شده زمینه... 6-Amini, N., Soleimani, M., Ghalyanchi Langeroudi, A., & Majidzadeh, K. (2010). A polymerase chain reaction method for rapid detection of Salmonella typhi. HBI_Journals,Vol,8, No,3, pp: 159-165. 7-Aminzare, M., Nairiz Naghdehi, M., Rasouli, S. & Delshad, R. (2009). Isolation of Salmonella of local yolk in Urmia. Large traps Clinical Researches, Vol,3, No,7, pp: 51-57. 8-Ardestani, H., Mousavi Gargari, SL., Nazarian, S.& Amini,J. (2008). Rapid and Specific Detection of Salmonella typhimurium by PCR-ELISA. Modares Journal of Medical Sciences:Pathobiology. Vol, 10, pp: 51-62. 9-Barrow, P. (2007). Salmonella infections: immune and non-immune protection with vaccines. Avian Pathology, Vol,36, No,1, pp: 1-13. 9-Baumler, A. J., B. M. Hargis, and R. M. Tsolis. 2000. Tracing the origins of Salmonella outbreaks. Science 287:50 52. 10-Biadaki, Z., Tehrani poor, A., Dadpour, S. & Gholizade, H. (1392). Prevalence of Salmonella serotypes that poultry carcasses slaughtered in the industrial city of Birjand in 1391. Journal of Birjand University of Medical Sciences, Vol,20, No,2. pp: 191-197. 11-Braden, C. R. 2006. Salmonella enterica serotype Enteritidis and eggs: A national epidemic in the United States. Clinical Infectious Disease. Vol,43, pp:512 517. 12-CDC Centers for Disease Control, Prevention (2009). Preliminary FoodNet data on the incidence of infection with pathogens transmitted commonly through food 10states, 2008. Morbidity and Mortality Weekly Report, Vol,58, No,13, pp: 333 337. 13-Chashni, S., Hassanzadeh, M., Fard, M., & Mirzaie, S. (2009). Characterization of the Salmonella isolates from backyard chickens in north of Iran, by serotyping, multiplex PCR and antibiotic resistance analysis. Archives of Razi Institute, Vol, 64,No,2. pp: 77-83. 14-Cheraghchi, N., Khaki, P., Moradi Bidhendi, S., & Sabokbar, A.(2014). Identification of isolated Salmonella enterica serotype gallinarum biotype pullorum and gallinarum by PCR-RFLP. Jundishapur Journal of Microbiology. Vol, 7,No,9. e19135. 15-Control, C. f. D., & Prevention. (2009). Preliminary FoodNet Data on the incidence of infection with pathogens transmitted commonly through food--10 States, 2008. MMWR. Morbidity and mortality weekly report, Vol,58, No,13. pp: 333. 16-Cox, N. A., J. A. Cason, and L. J. Richardson. 2011. Minimization of Salmonella contamination in raw poultry. Annual Review of Food Science and Technology. Vol,2,PP:75 95. 17-Dallal, M. M. S., Taremi, M., Gachkar, L., Modarressi, S., Sanaei, M., Bakhtiari, R., Zali, M. R. (2007). Characterization of antibiotic resistant patterns of Salmonella serotypes isolated from beef and chicken samples in Tehran. Jundishapur Journal of Microbiology, Vol,2 No,4. pp: 124-131. 18-Dhillon, A. S., H. L. Shivaprasad, P. Roy, B. Alisantosa, D. Schaberg, D. Bandli, and S. Johnson.( 2001). Pathogenicity of environmental origin salmonella in specific pathogen-free chicks. Poultry Science. Vol,80,PP:1323 1328. 19-Ebrahimvandi, Z., Khaki, P., Darvishi, S. & Moradi Bidhendi, S. (2014). Isolation, serotypes and antibiotic resistance patterns of Salmonella isolates poultry of Arak. Int J Enteric Pathog, Vol,2, No,3. pp: 18-31. 20-European Food Safety Authority EFSA (2011). The European Union summary report on trends and sources of zoonoses, zoonotic agents and food-borne outbreaks in 2009. EFSA Journal, 9, 1 378 (Available from bhttp://www.efsa.europa.eu/en/ efsajournal/ pub/2090.htm>. Accessed October, 2012). 21-Ezatpanah, E., Moradi Bidhendi, S., Khaki, P., Ghaderi, R., Seyedan, J. E., & Moghtadaee, S. (2011). Isolation, serotyping and antibiotic resistance pattern of isolated Salmonella from chicken of Arak. IranianVeterinary Journal,Vol,9, No,2, pp: 88-96. 22-Feasey, N. A., Dougan, G., Kingsley, R. A., Heyderman, R. S., & Gordon, M. A. (2012). Invasive non-typhoidal Salmonella disease: an emerging and neglected tropical disease in Africa. The Lancet, Vol,379, No,9835. pp: 2489-2499. 23-Finstad, S., O'Bryan, C. A., Marcy, J. A., Crandall, P. G., & Ricke, S. C. (2012). Salmonella and broiler processing in the United States: Relationship to foodborne salmonellosis. Food Research International, Vol,45, No,2. pp: 789 794. 24-Foley, S. L., Nayak, R., Hanning, I. B., Johnson, T. J., Han, J., & Ricke, S. C. (2011). Population dynamics of Salmonella enterica serotypes in commercial egg and poultry production. Applied and Environmental Microbiology, Vol,77, No,13. pp: 4273-4279. 25-Gantois, I., R. Ducatelle, F. Pasmans, F. Haesebrouck, R. Gast, T.J. Humphrey, and F. Van Immerseel. (2009). Mechanisms of egg contamination by Salmonella enteritidis. FEMS Microbiology Review.Vol,33,PP:718 738. 26-Gast, R. K. (2007). Serotype-specific and serotype-independent strategies for preharvest control of food-borne Salmonella in poultry. Avian diseases, Vol,51, No,4. pp: 817-828. 27-Ghaderi, R., Tadayon, K., Avagyan, S., Khaki, P., Moradi Bidhendi, S., Forbes, KJ., Mosavari, N., Toroghi, MR., Moosakhani, F., Banihashemi, R., Sekhavati, M., Karimnasab, N.(2013). The population structure of Salmonella enterica Enteritidis in Iran analyzed by multiple-locus variable-number tandem repeat analysis. Tropical Animal Health and Production. 45:889 894. 28

شماره 109 نشريه دامپزشكی زمستان 1394 28-Gharahkhani, M., & Khaki, P. (2013). Evaluation of extendedspectrum beta-lactamases producing isolates of Salmonella spp. from different sources using by phenotypic and genotypic methods. Iranian Journal of Medical Microbiology, Vol,6, No,4. pp: 59-71. 29-Golab, N., Khaki, P. & Noorbakhsh, F. (2014). Molecular typing of Salmonella isolates in poultry by Pulsed-Field Gel Electrophoresis in Iran. International Journal of Enteric Pathogens. Vol,2,No,4, e21485. 30-Grimont, P. A. D., & Weill, F. -X. (2007). Antigenic formulae of the Salmonella serovars. WHO Collaborating Centre for Reference and Research on Salmonella (9th ed.).paris: Institut Pasteur (Available from http://www.pasteur.fr/ip/portal/action/webdriveaction- Event/oid/01s-000036-089. Accessed October, 2011. 166 pp.) 31-Haddadian, M., Karimi, V., Zahraisalehi, T., Barin, A. & Ghalyanchi Langrodi, A. (2011). Evaluation of contamination rate of mice to Salmonella species in Tehran avicultures Veterinary Clinical Pathology, Vol, 6, No,2. pp: 1535-1541. 32-Haghbin Nazarpak, H., Firozi, S. & Asgari Badoii, M. (2010). Evaluation of contamination rate of sparrows in industrial fields rearing broilers by Salmonella serovers in Babol. Veterinary Microbiology, Vol,7, No,2. pp: 11-16. 33-Hamidian, M., Tajbakhsh, M., Payghambari, S.M., Dabiri, H., Shekarzadeh, L., Rezadehbashi, M. & Zali, M.R.. (2009). Fluoroquinolone resistance in Salmonella isolates from cases of acute diarrhea in patients admitted to hospitals in Tehran. Iran infectious and Tropical Diseases, Vol,14, No,44. pp: 51-54. Hamidian, M., Tajbakhsh, M., Walther-Rasmussen, J., & Zali, M.-R. (2009). Emergence of extended-spectrum beta-lactamases in clinical isolates of Salmonella enterica in Tehran, Iran. Japanese Journal Infectous Disease, Vol,62, No,5, pp: 368-371. 34-Hemmatzadeh, F., Salemi,A. (1995). Introduction of Salmonella-isolates from human and animal cases with epidemiological attitude towards salmonellosis in Chahar-Mahal Bakhtiyari state. Journal of Veterinary Research, Vol,49, No,(1-2), pp: 83-91. 35-Hitchner, S. B. (2004). History of biological control of poultry diseases in the U.S. Avian Disease. Vol,48,pp:1 8. 36-Hosseinpour, M., Sabokbar, A., Bahktiari, A. & Parsa, S. (2012). Comparative tracing of Salmonella in chicken Kebab samples collected from Tehran with three molecular methods, culture and ELISA. Microbial World Magazine, Vol,6, No,1, pp: 62-72. 37-Howard, Z. R., C. A. O Bryan, P. G. Crandall, and S. C. Ricke. 2012. Salmonella enteritidis in shell eggs: Current issues and prospects for control. Food Research International. Vol,45,pp:755 764. 38-Karami, A., Bagheri, B., Ahmadi, Z. & Pouraliganji, F (2011). Comparison of fluorescent LAMP and PCR methods in molecular detection of Salmonella. Journal of Mazandaran University of Medical Sciences (letter university), Vol,22, No,95. pp: 48-55. 39-Karimidareabi, H., Karimi, M. & Ebrahimi Mohammadi, K. (2011). Identification inva genes to identify the prevalence of Salmonella in poultry carcasses by using PCR Large traps. Clinical Researches, Vol,6, No,2. pp: 53-58. 40-Khaki, P., Moradi Bidhendi, S., & Ezatpanah, E. (2013). PCR RFLP of isolated Salmonella from poultry with Sau3AI and HhaI restriction endonucleases in Arak. International Journal of Molecular & Clinical Microbiology. Vol,1.pp: 256-261. 41-Koo, O. K., S. A. Sirsat, P. G. Crandall, and S. C. Ricke. (2012). Physical and chemical control of Salmonella in ready-to-eat products. Agriculture Food Annual Bacteriology. 2:56 68. 42-Marin, C., & Lainez, M. (2009). Salmonella detection in feces during broiler rearing and after live transport to the slaughterhouse. Poultry Science, Vol,88,pp: 1999 2005. 43-Mead, G., A. M. Lammerding, N. Cox, M. P. Doyle, F. Humbert, A. Kulikovskiy, A. Panin, V. P. do Nascimento, M. Wierup. (2010). Scientific and technical factors affecting the setting of Salmonella criteria for raw poultry: The Salmonella on raw poultry writing committee. Global perspective. Journal Food Protection. Vol, 73,pp:1566 1590. 44-Miranzadeh, H., Zahraei Salehi, T., & Karimi, V. (2012). The count of aerobic mesophil bacteria and isolate Salmonella spp on egg in Isfahan.. Veterinary Journal (Pajouhesh -va- SazandegiI), Vol,94. pp: 31-36. 45-Moradi. (2009). Comparison of PCR and LAMP in molecular detection of Salmonella. Journal of Zanjan Medical University., Vol,17, No, 67. pp:66-77. 46-MoradiBidhendi, S., Khaki, P., Abasi, E., Ghaderi, R. (2010). Isolation and identification of Salmonella isolates from poultry in 1388. Quarterly Journal of Microbiology Knowledge, Vol,2, No,7.53-68. 47-Morshed, R.(2012) Bacteriological study of broiler flocks(salmonella contamination) in Amol city, Veterinary Journal (Pajouhesh & Sazandegi) No, 97. pp: 23-28. 47-Morshed, R., & Peighambari, S. M. (2010). Drug resistance, plasmid profile and random amplified polymorphic DNA analysis of Iranian isolates of Salmonella enteritidis. The new microbiologica, Vol,33, No,1. pp: 47. 48-Muth, M. K., Fahimi, M., & Karns, S. A. (2009). Analysis of Salmonella control performance in U.S. young chicken slaughter and pork slaughter establishments. Journal of Food Protection, Vol,72,No,1,pp: 6 13. 29

مروری بر مطالعات انجام شده زمینه... 49-Naghoni, A. & Ranjbar, R. (2010). Increasing the isolation of Salmonella enterica strains resistant to nalidixic acid in Tehran Journal of Infectious and Tropical Diseases,Vol, 15, No,51. pp: 15-19. 50-Nayebi, N., Ghoreshi, S.A., Harzandi, N., Shamsara, M., Tabaraei, B. & Bakhtiyari, A. (2011). Evaluation of PCR method for detection of Salmonella enteritidis in poultry products in the Karaj. Medical Science Journal of Islamic Azad University,Vol, 21, No,1. pp: 32-37. 51-Nosrati, S., Sabokbar, A., Mehroz Dezfolian, M., Tabarrai, B. & Fallah, F. (2011). Prevalence of Salmonella typhimurium, typhi and enteritidis in food in Mofid hospital. Research in medicine, Vol, 36, No,1. pp: 43-48. 52-Rabsch, W., B. M. Hargis, R. M. Tsolis, R. A. Kingsley, K. Hinz, H. Tschape, and A. J. Baumler.(2000). Competitive exclusion of Salmonella enteritidis by Salmonella gallinarum in poultry. Emerging in Infectious Disease. Vol,6,pp:443 448. 53-Rahmani. (2008). Evaluation of Salmonellosis in decorative bird in Tehran spark : to determine the serotypes and resistance patterns of Salmonella isolated. PhD thesis in Tehran University. 54-Ranjbar, R., Naghoni, A., Panahi, Y. & Izadi, M. (2009). Antibiotic sensivity pattern strain Salmonella isolates from cases into Ten antibiotics in the treatment of less common Salmonella infection. Iran infectious and Tropical Diseases, Vol, 14, No,46. pp: 41-44. 55-Rasschaert, G., Houf, K., Godard, C., Wildemauwe, C., Pastuszczak-Frak, M., & De Zutter, L. (2008). Contamination of carcasses with Salmonella during poultry slaughter. Journal of Food Protection,Vol,71,No,1,pp: 146 152. 56-Saadati, M., Ghorbani, N., Barati, B., Nazariyan, S., Shirazi, M., Shirazi, M.B., Shirzad, H. & Nakhaei Sistani, R. (2008). Identification of Salmonella typhi based on ViaB gene by PCR. Journal of Sabzevar University of Medical, Vol, 16, No,4. pp:221-227. 57-Sadeghizali, M.H., Hashempour, M., Kalbkhani, M. & Delshad, R. (2009). Comparative evaluation of contamination by Salmonella in different organs (heart, liver, ovary, feces) in slaughtered chickens slaughter house Urmie. Large traps Clinical Researches, Vol,5, No,1. pp: 57-60 58-Salehi, M., Anamnam, M. & Mosavari, N. (2008). Accurate detection and differentiation of Salmonella enteritidis isolates from farms and conservation of Iranian birds by using the Multiplex PCR. Microbial Biotechnology, Vol,12, No,4. pp: 35-42. 59-Saneifard, F., Saifi, M., Ashraghi, S., Zahraiesalehi, T., Pourmand, M.R., Ranjbar, R., Bakhtiari, R., Mardani, N. & Soltandalal, M,M. (2009ss). Characterization of Salmonella enteritidis strains isolated from human and food samples by ERIC-PCR and determine their antibiotic resistance. Journal of Infectious and Tropical Diseases, Vol,14, No,51. pp: 7-13. 60-Shafaati, M., Shefaati, M. & Khodadost, M (2010). Detection of Salmonella enterica serotype Typhimurium in tomato by PCR based on hila gene. Medical Science Journal of Islamic Azad University, Vol, 22, No,4. pp: 273-278. 61-Shahmardani Firozjanim M., Karimi, V., Sefidgar, S.A.A. & Zahraisalehi, T. (2008). Prevalence of Salmonella serovars in humans and Poultry in babol. PhD thesis in Tehran University. 62-Shapouri, R., Rahnema, M., & Eghbalzadeh, S. (2009). Pce of Salmonella serotypes in poultry meat and egg and determine their antibiotic sensitivity in Zanjan city. The Quarterly Journal of Biological Sciences, Vol,6, No,2. pp: 63-71. 63-Shokri, R., Tabaraei, B., Hatami, S., & Nilchizade Rahbar, O. (2012). Rapid identification of Salmonella in dairy products by P- CEIA. Iranian Journal of Medical Microbiology,Vol, 5, No,4. pp: 29-34. 64-Sidavi, A. (2012). Determine the relative populaetion of Salmonella in poultry digestive system by PCR. Animal Biology, Vol,5, No,4. pp: 59-72. 65-Soltan Dallal, M., Rastegar Lari, A., & Sharifi Yazdi, M. (2014). Pattern of serotyping and antibiotic resistance of Salmonella in children with diarrhea. Journal of Gorgan University of Medical Sciences, Vol,16, No,1. pp:100-105. 66-Tajbakhsh, M., Hamidian, M., Rahbar, M., Mohammadzade, M., Dabiri, H. & Zali, M.R. (2010). The prevalence broad spectrum Beta lactams type of CTX-M in clinical strains of Salmonella isolated in Tehran. Iran infectious and Tropical Diseases, Vol,15, No,50. pp: 39-44. 67- Tajbakhsh, M., Yaghoobi Avini, M., Khajeh, J.A., Alebouyeh, M., Azemalhosseini Mojarad, E. & Zali, M.R. (2012). Increasedresistance phenotype resulted from elevated β-lactamase enzyme activity in Salmonella clinical isolates. Journal of Isfahan Medical School, Vol,30, No,178.pp:39-44. 68-Van Immerseel, F., Methner, U., Rychlik, I., Nagy, B., Velge, P., Martin, G., Barrow, P. (2005). Vaccination and early protection against non-host-specific Salmonella serotypes in poultry: exploitation of innate immunity and microbial activity. Epidemiology and infection, Vol,133, No,06. pp: 959-978. 69-Wales, A., & Davies, R. (2011). A critical review of Salmonella typhimurium infection in laying hens. Avian Pathology, Vol,40, No,5. pp: 429-436. 70- World Health Organization. WHO report 2014: Antimicrobial Resistance:Global Report on Surveillance (Summary). 2014:3 6. 30